
O LNFP I (Lacto-N-fucopentaose I) é um HMO α1-2 fucosilado altamente abundante no leite materno. O GlyCare™ LNFP I está atualmente em desenvolvimento.
Estudos clínicos mostraram uma relação entre os HMOs e alguns resultados imunológicos em bebês. A ciência emergente relata que HMOs específicos, com nível correto de suplementação, podem ajudar a reduzir o risco de certas infecções em bebês que consomem fórmula infantil e nos que são amamentados.
Evidências emergentes de estudos pré-clínicos relatam que o LNFP I pode ajudar a saúde imunológica por meio da inibição da aderência do patógeno à parede celular intestinal (1,2,3) e efeitos antimicrobianos por meio da ligação de toxinas (4,5,1).
Estudos clínicos e pré-clínicos mostraram que os HMOs podem ajudar a estimular o crescimento de bactérias benéficas importantes para o desenvolvimento da microbiota e da saúde intestinal. Evidências de estudos pré-clínicos relatam que o LNFP I pode ter um papel importante na saúde intestinal devido ao seu impacto positivo no crescimento de bifidobactérias, consideradas benéficas para a saúde intestinal (6,7).
1. Crane, J. K., Azar, S. S., Stam, A., & Newburg, D. S. (1994). Oligosaccharides from Human Milk Block Binding and Activity of the Escherichia coli Heat-Stable Enterotoxin (STa) in T84 Intestinal Cells. The Journal of Nutrition, 124(12), 2358–2364. https://doi.org/10.1093/jn/124.12.2358
2. Lindenberg, S., Sundberg, K., Kimber, S. J., & Lundblad, A. (1988). The milk oligosaccharide, lacto-N-fucopentaose I, inhibits attachment of mouse blastocysts on endometrial monolayers. Journals of Reproduction & Fertility, 83.
3. Brassart, D., Woltz, A., Golliard, M., & Neeser, J. R. (1991). In vitro inhibition of adhesion of Candida albicans clinical isolates to human buccal epithelial cells by Fucα1→2Galβ-bearing complex carbohydrates. Infection and Immunity, 59(5), 1605–1613. https://doi.org/10.1128/iai.59.5.1605-1613.1991
4. El-Hawiet, A., Kitova, E. N., Kitov, P. I., Eugenio, L., Ng, K. K. S., Mulvey, G. L., … Klassen, J. S. (2011). Binding of Clostridium difficile toxins to human milk oligosaccharides. Glycobiology, 21(9), 1217–1227. https://doi.org/10.1093/glycob/cwr055
5. El-Hawiet, A., Kitova, E. N., & Klassen, J. S. (2015). Recognition of human milk oligosaccharides by bacterial exotoxins. Glycobiology, 25(8), 845–854. https://doi.org/10.1093/glycob/cwv025
6. Asakuma, S., Hatakeyama, E., Urashima, T., Yoshida, E., Katayama, T., Yamamoto, K., Kumagai, H., Ashida, H., Hirose, J., and Kitaoka, M. (2011). Physiology of consumption of human milk oligosaccha- rides by infant gut-associated bifidobacteria. Journal of Biological Chemistry, 286(40):34583–34592.
7. Zhao, C., Wu, Y., Yu, H., Shah, I. M., Li, Y., Zeng, J., Liu, B., Mills, D. A., and Chen, X. (2016). The one-pot multienzyme (OPME) synthesis of human blood group H antigens and a human milk oligosac- charide (HMOS) with highly active Thermosynechococcus elongatus α1-2- fucosyltransferase. Chemical Communications, 52(20):3899–3902.
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