LNFP I (Lacto-N-fucopentaosa I) es un HMO α1-2 fucosilado muy abundante en la leche materna. GlyCare™ LNFP I está actualmente en desarrollo.
Los estudios clínicos sugieren una relación entre los HMO y algunos resultados inmunológicos en los bebés. Los nuevos datos científicos sugieren que los HMO específicos en el nivel correcto de suplementación pueden ayudar a reducir el riesgo de ciertas infecciones en los bebés que consumen leche de fórmula infantil y en los que son amamantados.
Las nuevas pruebas obtenidas en estudios preclínicos sugieren que los LNFP I pueden favorecer la salud inmunitaria mediante la inhibición de la adherencia de los patógenos a la pared celular intestinal (1,2,3) y los efectos antimicrobianos mediante la unión a las toxinas (4,5,1).
Los estudios clínicos y preclínicos indican que los HMO pueden ayudar a estimular el crecimiento de bacterias beneficiosas, que se consideran importantes para el desarrollo de la microbiota y la salud intestinal. Las pruebas de los estudios preclínicos sugieren que el LNFP I puede tener un papel importante en la salud intestinal a través de su impacto positivo en el crecimiento de las bifidobacterias, que se consideran beneficiosas para la salud intestinal (6,7).
1. Crane, J. K., Azar, S. S., Stam, A., & Newburg, D. S. (1994). Oligosaccharides from Human Milk Block Binding and Activity of the Escherichia coli Heat-Stable Enterotoxin (STa) in T84 Intestinal Cells. The Journal of Nutrition, 124(12), 2358–2364. https://doi.org/10.1093/jn/124.12.2358
2. Lindenberg, S., Sundberg, K., Kimber, S. J., & Lundblad, A. (1988). The milk oligosaccharide, lacto-N-fucopentaose I, inhibits attachment of mouse blastocysts on endometrial monolayers. Journals of Reproduction & Fertility, 83.
3. Brassart, D., Woltz, A., Golliard, M., & Neeser, J. R. (1991). In vitro inhibition of adhesion of Candida albicans clinical isolates to human buccal epithelial cells by Fucα1→2Galβ-bearing complex carbohydrates. Infection and Immunity, 59(5), 1605–1613. https://doi.org/10.1128/iai.59.5.1605-1613.1991
4. El-Hawiet, A., Kitova, E. N., Kitov, P. I., Eugenio, L., Ng, K. K. S., Mulvey, G. L., … Klassen, J. S. (2011). Binding of Clostridium difficile toxins to human milk oligosaccharides. Glycobiology, 21(9), 1217–1227. https://doi.org/10.1093/glycob/cwr055
5. El-Hawiet, A., Kitova, E. N., & Klassen, J. S. (2015). Recognition of human milk oligosaccharides by bacterial exotoxins. Glycobiology, 25(8), 845–854. https://doi.org/10.1093/glycob/cwv025
6. Asakuma, S., Hatakeyama, E., Urashima, T., Yoshida, E., Katayama, T., Yamamoto, K., Kumagai, H., Ashida, H., Hirose, J., and Kitaoka, M. (2011). Physiology of consumption of human milk oligosaccha- rides by infant gut-associated bifidobacteria. Journal of Biological Chemistry, 286(40):34583–34592.
7. Zhao, C., Wu, Y., Yu, H., Shah, I. M., Li, Y., Zeng, J., Liu, B., Mills, D. A., and Chen, X. (2016). The one-pot multienzyme (OPME) synthesis of human blood group H antigens and a human milk oligosac- charide (HMOS) with highly active Thermosynechococcus elongatus α1-2- fucosyltransferase. Chemical Communications, 52(20):3899–3902.
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